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大家好,我目前正在使用 Bioconductor v2.13 在 debian 服务器上运行 R 3.0.2.我的问题很简单,虽然通过互联网搜索并没有为我提供明确的答案: 如何从 R 3.0.2 降级.到 R 2-15? 考虑到我保留 R 3.0.2,我如何将 Bioconductor 降级到 v2.12? 提前谢谢你, 解决方案 通常,Bioconductor 设计为与
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我正在尝试运行 R 脚本(特别是,我正在使用 Bioconductor 包中的“getLineages"函数,弹弓. 我想知道为什么会出现错误“向量内存耗尽(达到限制?)"?在我使用此函数时出现,因为与此包中的其他函数(使用我正在分析的数据)相比,它似乎不是最占用内存的函数. 我知道在 Stackoverflow 上还有其他类似的问题,但他们都建议切换到 64 位版本的 R.但是,我已
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我需要在 R 上安装不同的软件包.操作系统是 windows 的 ubuntu.当我尝试 "BiocManager::install("Biobase") 时,出现以下错误: ** R** 数据** 安装** 字节编译并为延迟加载准备包** 帮助*** 安装帮助索引** 构建包索引** 安装小插曲** 测试是否可以从临时位置加载已安装的包** 检查共享对象和动态库中的绝对路径mv: 无法将“/h
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如何使用 R 从 FASTA 文件中为 BED 文件中定义的每个间隔提取序列?使用的参考基因组是“Gallus gallus",可以通过以下方式获得: source("http://bioconductor.org/biocLite.R")biocLite("BSgenome.Ggallus.UCSC.galGal4")图书馆(BSgenome.Ggallus.UCSC.galGal4) 我的
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我将 gregexpr 替换为 gregexpr2 以检测重叠匹配.当我尝试. >subSeq3000 个字母的“DNAString"实例seq:ACACGTGTTCTATTTTCATTTGCTGACATTTTCTAGTGCATCATTTTTATTTTATTTTCATT....gregexpr2("TAAT|ATTA",subSeq)匹配错误[[i]]:下标越界 而 gregexpr("TA
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您好(这是我的第一条消息,所以如果有什么不对的地方,我很抱歉), 我已经遇到这个问题几天了.我无法安装新软件包,我读过类似的 问题 但就我而言,问题仅在我尝试安装新的 Bioconductor 包时出现(或者当我删除旧的并尝试重新安装时).问题是我总是得到下一条消息的一些变化(在这个例子中我试图安装 ComplexHeatmap): BiocManager::install(“Comple
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我正在尝试为R安装data.table库,但无法正常工作.我尝试同时使用CRAN和Bioconductor,但仍然收到错误消息,该软件包不适用于R 3.2.2: >biocLite('data.table')BioC_mirror:http://bioconductor.org使用Bioconductor版本3.1(BiocInstaller 1.18.4),R版本3.2.2.安装包"data.
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我有两个 Large DNAStringSet 对象,其中每个对象包含2805个条目,每个对象的长度为201.我想简单地将它们组合起来,所以要具有2805个条目,因为每个对象都是这个大小,但是我想拥有一个对象,将两者结合起来. 我试图这样做 s12
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我想检索一系列区域中存在的基因.说,我有一个带有查询位置的床文件,例如: 1 2665697 4665777 MIR2011 10391435 12391516 MIR5001 15106831 17106911 MIR1221 23436535 25436616 MIR2341 23436575 25436656 MIR488 我想得到属于那些区域的基因. 我尝试使用 biomaR
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我正在使用以下代码从Entrez ID中检索基因符号: library("biomaRt")ensembl
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我正在尝试生成一个简单的热图,其中包含每一行和每一列 用黑线隔开.但是,由于某种原因,这只会发生 第一种和最后一种颜色.我的colorpanel()中的中间颜色 命令中有一条我想要的附加水平线和垂直线 使用heatmap.2()绘制时摆脱.关于为什么我会看到这些行的任何建议? library(gplots) my.matrix
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我正在尝试在hdf5文件中更新1组中的7个数据集,但是更新后的数据集的大小尺寸与原始大小不同(但维数相同,即1D,2D和3D).有没有一种方法可以更改维度属性以更新数据集?或者,我可以删除上一个组,然后在该位置创建一个新组吗?我宁愿不重建整个h5文件(创建文件,创建组,创建数据集),因为它相当复杂. 我在R中使用Bioconductor rhdf5软件包. 示例数据: # loa
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似乎我永远无法评估返回的'paste0'值以及所有带引号的字符.我是否必须使用'substr'或'gsub'删除这些引号? eval(paste0('1','+','1')) [1] "1+1" eval(expression(paste0('1','+','1'))) [1] "1+1" eval(expression("1+1")) [1] "1+1" eval("1+1")
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我有一个数据,这些数据的元素中包含一些NA值。 我想做的是在不删除行的情况下执行群集 ,其中不存在NA。 我知道雏菊中的 gower 距离测量这样的情况。 但是为什么我下面的代码不起作用? 除了“雏菊”以外,我还欢迎其他选择。 #绘制热图和树状图。 library(“ gplots”) library(“ cluster”) #任意分配NA给某些元素 mtc
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我正在比较两种在R中使用树状图创建热图的方法,一种是使用 made4 的 heatplot 创建热图的方法,另一种是一个具有 gplots 的 heatmap.2 的人。适当的结果取决于分析,但我试图理解默认值为何如此不同的原因,以及如何使两个函数给出相同的结果(或高度相似的结果),以便我理解所有的“黑盒”参数 这是示例数据和数据包: require(gplots) #made fr
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在生物信息学/微生物生态学文献中,一种相当普遍的做法是在构建系统树之前,将多个基因的多个序列比对连接起来.用R术语来说,可以说它们与来自的生物体“融合"起来更为清楚,但是我敢肯定例子是更好的. 说这是两个多重序列比对. library(Biostrings) set1
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几天来我一直在尝试安装DESeq2进行一些分析. R和biocLite是最新的,尝试运行 时遇到权限错误 biocLite("DESeq2") 我收到的大部分都是好消息,但最后我得到了: 1: In install.packages(pkgs = pkgs, lib = lib, repos = repos, ...) : installation of package ‘XML
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我想使用Bioconductor的GenomicFeatures和TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene R软件包从清单中获取人类基因的坐标(由hgnc基因id组成). library(TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene) txdb=(TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene) my_genes = c(
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我试图在具有2个批处理的数据集上运行ComBat脚本,但是由于我是R新手,因此出现错误,并且我不知道如何检查代码. 我以这种方式运行ComBat方法: # Load sva library(sva) # Read expression values dat = read.table('dataset.xls', header=TRUE, sep='\t') # Read sample
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我想比较两个数据集df1和df2,以便将df2$ID中的唯一字符添加为df1中的新列,并为每个数据集分配df2$Xp值基因,如果df1的坐标与df2的坐标重叠: df1
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